Artemia salina
La culture

Dessin ECKERTGuillaume

Par Denis Jeandel

Historique

C'est en 1755 que le Docteur Schlosser, un Anglais, décrit pour la première fois Artémia Salina. En 1840 le Docteur Joly apporte une description plus complète de ce petit crustacé.

En 1933 Since Seale et en 1939 Rollefsen utilise cette nourriture à haute valeur nutritive en aquaculture. Depuis l'utilisation augmente de façon exponentielle et, des méthodes de cultures sont étudiées notamment par:

Classification

Morphologie

Il s'agit dans ce paragraphe de faire un bref rappel de la morphologie externe d'Artemia Salina. Adulte Artemia Salina est un petit crustacé de 8 à 10 mm de longueur. On distingue 3 parties:

La tête : elle porte un oeil nauplien médian et une paire d'yeux latéraux, dans sa partie antérieure on remarque une paire d'antennes courbées portant à leur extrémité 3 petites soies. Les antennes sont un critère de détermination des sexes ; chez le mâle les antennes prennent la forme d'une grosse pince qui sert à saisir la femelle lors de l'accouplement chez cette dernière la paire d'antennes est beaucoup plus petite. On trouve sur la tête 3 appendices (une paire de mandibules, une paire de maxillules, une paire de maxilles), l'ensemble étant appelé par Joly " le chaperon "

Le thorax : il est composé de 11 segments chaque segment porte une paire d'appendices natatoires foliacés

L'abdomen : il est composé de huit segments

Les 2 premiers segments dit génitaux ( deux pénis chez le mâle / la poche incubatrice des femelles )

Le dernier segment abdominal porte deux appendices portant de longues soies. Entre ces appendices se trouve l'anus.

 
D’après M. HAYO ET G. SCHWARZ

Origine

Artemia Salina est un animal cosmopolite trouvé sur chaque continent deux origines sont définies

La connaissance de l'origine d'Artemia Salina est donc très importante puisque l'on sait que les lacs salés contiennent essentiellement du chlorure de sodium ( Na cl ) alors que les lacs salins contiennent du sulfate de sodium ( Na So4 ).Pour un rendement maximum, le choix du sel sera donc capital dans les méthodes de mise en culture.

Il n'est pas dans ce propos l'objet de faire une énumération des différents sites de récolte des Cystes (oeufs ) d'Artemia Salina ce serait long, fastidieux et inutile mais citons tout de même quelques origines bien connues dans la culture intensive.

Les cystes

Les cystes ou plus communément oeufs d'Artemia Salina vont nous permettre de démarrer une culture nous aurons ainsi la possibilité d'utiliser les naupliis fraîchement écloses ou de laisser se faire l'évolution vers le stade adulte. 

Développement

Le dry cyste d'une taille de 200 à 300 microns a une forme biconcave qui va se transformer en milieu hydraté et en présence de sel.

Tolérance de cystes à la température

Les cystes non hydratés sont très tolérant aux températures, ils ne seront pas affectés par les températures extrêmes de - 250°c à + 6o°c.

Les cystes hydratés

Alors commence le cycle métabolique qui va aboutir à l'éclosion (environ 15 à 20 heures ) 3 stades sont ainsi observés:

 
Selon Martina Hayo et Gerhard Schwarz
A + B : Fracture du cyste (breaking)
C + D + E : Evolution
F : Naissance (hatching)

L'embryon est maintenant directement en contact avec le milieu extérieur. Dans les premières heures sont système d'osmorégulation ionique n'est pas parfait, il va se développer en fonction du milieu dans lequel il évolue. Le pH a une énorme influence sur le développement du système d'osmorégulation, le pH optimum se situant entre 8 pH et 9 pH.

Paramètres idéaux pour l'optimisation de la production.

Nous allons étudier les différents paramètres permettant la mise en culture des cystes dans les conditions optimales. Dans l'ordre 

La température

Entre 25°c et 30°c l'éclosion est maximum dans un délais de 12 heures (ne pas oublier qu'à 33°c le processus métabolique est stoppé ) il faut donc une résistance chauffante fiable équipée d'un thermostat et maintenir la culture à 28°c environ. A cette température le processus métabolique se déroulant parfaitement les nauplius posséderont un maximum de valeur énergétique.

La salinité et le pH

Comme nous l'avons vu précédemment il est important de connaître l'origine de nos cystes afin de constituer au mieux le milieu de culture (Rappel : lacs salés utilisation de chlorure de sodium Na Cl, lacs salins utilisation de sulfate de sodium Na SO₄).

Les ouvrages divergent fortement sur la quantité de sel dans laquelle l'éclosion se fera. 15 à 20 gr par litre selon certain, 10 gr pour 1/4 de litre selon d'autres, les cultures contenant 50 gr par litre utilisées à l'aquarium tropical de Nancy donnent d'excellents résultats. Les auteurs s'étant penchés sérieusement sur le développement des cystes mettent en évidence que l'adjonction d'hydrocarbonate de sodium ( Na HCO₃ ) à raison de 5°/00 augmente quantitativement et qualitativement la production. Le pH sera maintenu au environ de 8,3.

L'oxygène

Il est évident que la quantité d'oxygène varie en fonction de la quantité de cystes mis en culture les recommandations étant de 2 mg d'oxygène par litre de culture avec une aération par le fond.

La densité des cystes 

Il est important de connaître la densité de cystes à mettre en culture, des expériences ont montré qu'une augmentation de la densité de cyste diminue fortement l'éclosion par un métabolisme mal équilibré. 5 g de cyste par litre de culture optimise le rendement.

La lumière

L'éclairage de la culture est indispensable pendant les premières heures de l'hydratation des cystes. Un éclairage de 2000 lux en continu à la surface de la culture optimise les résultats. Des expérimentations montrent que la lumière n'a pas le même impact sur l'éclosion en fonction de la provenance des cystes. Le rendement est identique sous faible luminosité 20 lux que sous forte luminosité 2000 lux pour les souches des grands lacs salés des U.S.A. alors que des souches de San Pablo Bay (U.S.A.) nécessite une exposition minimum de 1000 lux pour un rendement correct. Nous retiendrons comme base 2000 lux préconisé qui donne dans tous les cas un rendement correct.

Conclusion

Nous possédons les différents paramètres permettant la mise en culture des cystes dans des conditions optimales.

Pendant les premières heures du stade larvaire les jeunes nauplius vivent sur leurs réserves énergétiques. Si notre culture a pour but de nourrir de jeunes alevins il est important de récolter les nauplius dans les premières heures qui suivent l'éclosion, après les deux premières mues (24 heures) les artémias perdent 27% de leur contenu calorifique.

METHODES D'ECLOSION

Nous n'observerons dans ce paragraphe que les principales méthodes proposées à l'échelle de l'amateur, la production industrielle nécessite des moyens importants et inutile à l'aquariophile.

1° Les boites dites éclosoir

C'est la plus simple des méthodes, on utilise une boite circulaire munie d'un couvercle opaque percée en son centre d'un trou permettant le passage du tamis de récolte. La boite est équipé de séparation interne en forme de labyrinthe.

Principe

La boite est remplie à hauteur des labyrinthes avec la solution de culture, les cystes sont déposés dans la partie la plus extérieure. A l'éclosion les naupliis vont voyager dans le labyrinthe pour gagner la zone centrale éclairée. La récolte se fera avec le tamis fourni.

Critique

C'est une technique peu rentable pour l'aquariophile.

2° Les incubateurs à Artémia

Vendus dans le commerce il s'agit de la mise en culture des cystes dans une bouteille munie d'un aérateur l'ensemble étant plongé dans un bac plastique de 3 l environ qui va permettre de réaliser un bain-marie. Le bain-marie est maintenu à 28°c, l'ensemble est éclairé et aéré.

Principe

3 étapes sont nécessaires : 

La mise en culture

L’ incubateur sera positionné tête en bas, le bouchon sera ouvert, la circulation d’air se fait de bas en haut avec échappement de l’air par le bouchon ouvert. La solution de culture remplie l’incubateur au 2/3, les cystes sont placés en suspension, le tout est placé dans le bain-marie préchauffé à 28°c dans un endroit éclairé.

Le repos

L’ air est coupé, le bouchon est fermé, on retourne l’incubateur en position incliné 30° environ pendant 5 mn. Les œufs non éclos vont surnager à la surface de la culture tandis que les débris vont s’accumuler dans la partie opposée au bouchon d’évacuation.

La récolte

Il suffit d’ouvrir le bouchon et de filtrer la culture sur un tamis à Artémia. L’ensemble est alors nettoyé pour une nouvelle culture.

Critique : 

3° La méthode du cône renversé

C’est peut-être la méthode la plus utilisée qui pourra satisfaire les productions peu ou très importantes, elle dérive d’une amélioration de la méthode précédente, gardant le principe de base et simplifiant la technicité des différentes phases. 

Matériel

L’utilisation d’un cône en p.v.c transparent semble le plus fonctionnel, c’est solide, pratique à manipuler et à nettoyer , le diamètre et la longueur du cône seront fonction du volume de la culture, j’utilise personnellement 3 cônes de 45 cm de hauteur et de 8 cm de diamètre. L’extrémité inférieure est munie d’un robinet à bille permettant la vidange du milieu de culture, le robinet est soudé de façon à monter dans le cône sur une hauteur de 3 cm environ. Un tube rigide d’arriver d’air est collé le long de la paroi interne du cône. Une résistance thermostatée de 25 w pour le chauffage. 

Principe

Critiqu

Méthodologie

Il est important de bien respecter les temps et les étapes de la décapsulation afin de ne pas détruire l’embryon et de ne pas polluer la culture.

Protocole de décapsulation d’1 kg Artémia

1^er temps : 

2^ème temps : 

3^ème temps :

4^ème temps : 

5^ème temps : 

BIBLIOGRAPHIE